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Experiências de genética com variantes de arroz- sessão 2

Trabalho realizado por: Leitão, Margarida nº16; Martins, Maria nº17; Neves, Beatriz nº4; Silva, Mariana nº 18


No dia 10/05/2024 no âmbito da disciplina de Biologia (12º ano), um grupo de alunos da Escola Secundária Quinta do Marquês dirigiu-se pela segunda vez ao ITQB para realizar uma segunda sessão do projeto destinado à extração do DNA do arroz.


PCR:


O que é? – A técnica de PCR (Reação em Cadeia da Polimerase) é uma técnica laboratorial que permite produzir rapidamente milhões de cópias de um segmento específico de DNA, in vitro.   


Como se faz? – Nesta técnica são necessários primers para iniciar o processo de replicação. São utilizados primers de DNA sintetizados quimicamente, que apenas hibridizam com a sequência complementar exata do DNA da amostra. Deste modo é possível determinar com exatidão a região do DNA a ser amplificada.


Para realizar este processo é necessário:


o   Primers de DNA

o   DNA polimerase

o   Nucleótidos (dATP, dCTP, dGTP, dTTP)

o   Uma solução tampão com iões Mg2+


E devem seguir-se os seguintes passos:


1.        Colocar as amostras no microtubo

2.       Adicionar o DNA

3.       Repetir o passo 1 e 2 para todos as amostras de DNA

4.      Colocar as amostras no termociclador

5.       Programar o termociclador

 

Depois de criar a mistura de reagentes, esta é aquecida a 95ºC (desnaturação do DNA), originando duas cadeias simples. De seguida a mistura é arrefecida a 45º/65ºC (ligação dos primers à cadeia molde). Por fim a mistura é aquecida a 72ºC permitindo a ação da DNA polimerase.

Nos ciclos seguintes a mistura é sujeita à mesma sequência de variações de temperatura.


Para que serve? - A sua finalidade é a produção de cópias de um segmento específico de DNA, rapidamente.


Eletroforese:


O que é? – Esta técnica é muito utilizada e tem um papel muito importante na análise laboratorial e nas pesquisas cientificas. Tem como objetivo a separação de macromoléculas como o DNA, RNA, proteínas e enzimas com diferentes tamanhos e cargas.


Como se faz? 

1.        Preparar o gel de agarose, que atua como peneira para separar os ácidos nucleicos.

2.        Após o arrefecimento do mesmo, este é transferido para a tina de eletroforese.

3.       Com o auxílio de micropipetas, as amostras de DNA são colocadas nos poços de agarose.

4.      Repetir o passo 3 para cada amostra, e colocar as amostras de DNA sempre em poços diferentes

5.       Os elétrodos metálicos são ligados às extremidades da tina.

Como os fragmentos de DNA estão carregados negativamente, então movem-se na direção do eletrão positivo e dependendo do seu tamanho podem percorrer várias distâncias. Quanto maior for o fragmento, menor será a distância percorrida.


Para que serve?

Esta técnica tem como principal objetivo a separação de macromoléculas como o DNA, RNA, proteínas e enzimas com diferentes tamanhos e cargas.

 

Procedimento:

1.        Identificar dois micro tubos com R e M respetivamente

2.       Identificar outros dois micro tubos com R- e M- respetivamente

3.       Identificar 10 micro tubos com números de 1 a 10 e a letra R

4.      Repetir o passo 3 para a letra M

5.       Para cada um dos micro tubos (M e R) preparar a mistura consoante os valores da tabela 1

6.       Para cada micro tubo (M e R) adicionar os primers consoante a tabela 2

7.       Colocar 24 µl da solução do micro tubo M nos tubos M e M-

8.      Repetir o passo 7 para R

9.       Colocar 1 µl de cada amostra de DNA extraído em cada um dos tubos M e R

10.    Colocar 1 µl de água ultra pura em cada um dos tubos M- e R-; 

11.      Colocar as amostras finais no termociclador



colocação das amostras no tubo
identificação dos microtubos


Tabela 1

Componente

Volume

GoTaq Buffer 5x 

84 µl 

MgCl2 (25mM)

33.6 µl 

Mistura de dNTPs 10 mM

10.5 µl 

Iniciador F 10 uM (“primer” Foward) 

16.8 µl 

Iniciador R 10 uM (“primer” Reverse)

16.8 µl 

GoTaq DNA polimerase (1 U/µl)  

3.36 µl 

Água ultrapura

170.94 µl 

 

Tabela 2

Tubo

Tipo de primer

Primer utilizado

R

Primer Forward

PRBF

 

Primer Reverse

PRBR

M

Primer Forward

PMKF

 

Primer Reverse

PMKR

Bibliografia: Manual 12ºano Odisseia

Sala das Ciências

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© Nuno Meia-Onça - Saladasciências

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